一、实验耗材与试剂配制
1. 实验材料
SPF 级小鼠(推荐新生 1–3 日乳鼠,细胞活力、纯度最优;成年小鼠亦可,细胞增殖偏弱)、超净工作台、CO₂培养箱、体视显微镜、恒温水浴锅、低温离心机、70 μm 细胞筛、培养皿、离心管、显微解剖器械套装
2. 试剂配方
- 预冷无菌 PBS(含双抗)PBS 粉剂配制,添加 100 U/mL 青霉素 + 100 μg/mL 链霉素,4℃预冷备用
- 混合消化液0.25% 胰蛋白酶 + 0.1% Ⅱ 型胶原酶,无血清 DMEM 稀释,现配现用
- 完全培养基DMEM/F12 基础培养基 + 10% 胎牛血清 (FBS) + 1% 青链霉素双抗
- 裂解试剂:Trizol(RNA 提取)、RIPA 裂解液 + 蛋白酶抑制剂(蛋白提取)
二、组织取材步骤(全程冰上低温操作,抑制细胞凋亡)
- 乳鼠脱颈处死,全身浸泡 75% 医用乙醇消毒 15 s,移入超净台;
- 俯卧固定小鼠,沿脊柱中线剪开背部皮肤与肌肉,暴露脊柱;
- 体视显微镜下剪开椎管,逐节取出两侧背根神经节(DRG);
- 收集所有 DRG 置于预冷含双抗 PBS 中,精细剔除外周神经纤维、结缔组织包膜、血管杂质;
- PBS 漂洗 2 次,彻底去除血液残留;无菌眼科剪将 DRG 剪碎至 1 mm³ 细小组织团块。
三、组织酶解消化
- 将剪碎 DRG 组织移入 15 mL 离心管,加入 3–5 mL 混合消化液浸没组织;
- 置于 37℃恒温水浴锅消化 35 min,每 10 min 轻柔吹打 3–5 次,打散组织团;
- 消化终点判断:组织呈絮状松散状态,即刻加入等体积完全培养基终止胰酶消化;
- 细胞悬液经 70 μm 无菌细胞筛过滤,去除未消化组织残渣。
四、离心富集与差速贴壁纯化(去除神经元核心步骤)
- 过滤后细胞悬液:1000 rpm,室温离心 5 min,小心弃去上清;
- 沉淀用 2 mL 完全培养基轻柔重悬,充分吹散细胞团;
- 将细胞悬液接种至细胞培养皿,放入 37℃、5% CO₂培养箱静置45 min; 原理:卫星胶质细胞贴壁速度快;大体积神经元悬浮于上清中,几乎不贴壁
- 缓慢吸取上层含神经元的悬浮上清丢弃,沿皿壁缓慢加入新鲜完全培养基;
- 若需极高纯度:可重复一次差速贴壁流程,大幅降低神经元污染率。
五、细胞常规培养
- 培养环境:37 ℃、5% CO₂、饱和湿度恒温培养箱;
- 接种后 24 h 首次全量换液,清除细胞碎片、凋亡杂质;
- 后续每 2~3 天更换一次完全培养基;
- 细胞生长状态:3~4 天汇合度可达 80%~85%;
- 图.武汉云克隆小鼠卫星胶质细胞(SGC)原代细胞白光形态图(x100)
使用建议:卫星胶质细胞增殖能力有限,优先选用 P1、P2 代细胞开展功能实验,传代过多会出现细胞老化、表型丢失。
六、细胞传代操作
- 弃旧培养基,预冷 PBS 漂洗细胞 1 次;
- 加入 0.25% 胰蛋白酶室温消化 2~3 min,显微镜下观察细胞皱缩变圆;
- 立刻加入完全培养基终止消化,轻柔吹打皿底制成单细胞悬液;
- 离心、重悬后按 1:2 比例分皿接种培养。
七、细胞纯度鉴定(免疫荧光法)
标志物判定: 卫星胶质细胞阳性标记:GFAP
图.武汉云克隆小鼠卫星胶质细胞(SGC)原代细胞免疫荧光鉴定图(GFAP抗体,x200)
阴性对照:NeuN(神经元标志物,用于排查神经元污染)
合格标准:GFAP 阳性细胞占比≥90%
八、关键注意事项 & 常见问题规避
- 取材全程低温:DRG 离体后极易受损,冰上操作缩短时长;
- 消化时间不可过长:过度消化会破坏细胞膜,大幅降低细胞活率;
- 差速贴壁时间严格把控:过短纯度不足,过长胶质细胞损耗过多;
- 成年小鼠 SGC 活性偏低,衰老更快,药物、机制实验首选新生乳鼠取材。